BL21(DE3)Electroporation-CompetentCell50μl/支
pUC19(controlvector,10pg/μl):10μl
保存條件(保質期):-80℃(6個月)
基因型
F-ompThsdSB(rB-mB-)galdcm(DE3)
產品說明
BL21(DE3)為Lon蛋白酶和OmpT外膜蛋白酶缺陷菌株。λ噬菌體DE3區(qū)含有T7噬菌體RNA聚合酶,該區(qū)整合于BL21的染色體上,所以稱為BL21(DE3)。BL21(DE3)菌株可同時表達T7RNA聚合酶和大腸桿菌RNA聚合酶,用于pET系列,pGEX,pMAL等質粒的蛋白表達。BL21(DE3)電擊感受態(tài)細胞經特殊工藝制作,pUC19質粒檢測轉化效率達1×1010cfu/μgDNA,可用于各種多肽,蛋白表達文庫的構建。
操作方法
1.0.1cm電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘,待其瀝干水分,正置5分鐘,待乙醇揮發(fā)干凈立即插入冰中,壓實冰面,電極杯頂離冰面0.5cm以方便蓋上杯蓋,冰中靜置5分鐘充分降溫。
2.取-80℃保存的BL21(DE3)電擊感受態(tài)細胞插入冰中5分鐘,待其融化,加入目的DNA(質?;蜻B接產物)并用手撥打EP管底輕輕混勻,避免產生氣泡,立即插入冰中。
A.測定轉化效率使用1μl10pg/μl的對照質粒pUC19;
B.對于連接產物,大部分公司的T4連接酶反應體系或50度反應重組體系可與BL21(DE3)電擊感受態(tài)混合后電擊轉化,無需進行DNA純化,但DNA濃度不能過高,DNA濃度不超過100ng/μl,體積不超過5μl/50μl感受態(tài)。
C.對鹽濃度較高的DNA溶液或反應體系請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液(10mMTrisHCl,pH7.5;1mMEDTA)重懸,然后與BL21(DE3)電擊感受態(tài)混合進行電擊轉化。
3.用200μl槍頭(用刀切除0.5cm槍尖)將感受態(tài)-DNA混合物快速移到電擊杯中,避免產生氣泡,蓋上杯蓋。
4.啟動電轉儀,設置參數:C=25μF,PC=200Ω,V=1.8kV(此為BioRad電轉儀推薦參數,也可按所用電轉儀推薦的參數操作),將電擊杯快速放入電轉槽中,電擊完成快速插入冰中。
5.2分鐘后從冰中取出電擊杯,放室溫,加入700μl不含抗生素的無菌S.O.C.培養(yǎng)基(室溫),用1ml槍吹吸電擊杯底部數次混勻后,轉移到50ml離心管(BDFalcon50ml錐形離心管等),向離心管中補加S.O.C.培養(yǎng)基至10ml。37℃,225rpm復蘇60分鐘。
6.5000rpm離心一分鐘收菌,重懸后取100-200μl涂布到含相應抗生素的S.O.C平板上(因菌量較大,若全部涂板請選用直徑15cm培養(yǎng)皿2-5個)。將平板倒置放于37℃培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)13-17小時。
S.O.C培養(yǎng)基配方
2%Tryptone
0.5%YeastExtract
10mMNaCl
2.5mMKCl
10mMMgCl2
10mMMgSO4
20mMglucose
PH-7.0
S.O.C.Mediumissuitableforuseinthefinalstepofcelltransformationtoobtain
maximaltransformationefficiencyofE.coli(Hanahan,1983).
注意事項
1.加入DNA時體積不應大于感受態(tài)體積的1/10。
2.電擊感受態(tài)細胞加入電擊杯應避免產生氣泡,氣泡會增加弧光放電風險。
3.當DNA不純或存在鹽,乙醇,蛋白及緩沖液等污染時,轉化效率急劇下降。
4.電擊杯里的離子可增加溶液的電導,增大在含有細胞和DNA的溶液中產生電流和弧光放電的風險。
5.若轉化大質?;蛳氆@得較高轉化效率,推薦使用高純質粒提取試劑盒提取質粒。質粒增大一倍,轉化效率下降一個數量級。
6.對于連接產物轉化,部分公司的連接體系或重組體系(例如:Thermo,NEB公司的T4連接酶系統(tǒng),NEB,天根的50度反應重組系統(tǒng))可以直接與BL21(DE3)電擊感受態(tài)混合后電擊轉化,無需純化,但DNA濃度不能過高,最好不超過100ng/μl。過高濃度連接產物或過大體積連接產物會降低轉化效率,增加弧光放電的風險。
7.混入質粒時應輕柔操作,吸取感受態(tài)細胞時避免用力過猛,以免剪切力過大損傷細胞膜,降低轉化效率。轉化高濃度的質粒或連接產物可相應減少最終用于涂板的菌量。
8.電擊感受態(tài)細胞最好保存在-80℃以下,高于-80℃超期儲存會導致轉化效率會下降。